Marquage clairsemé pour la RMN des protéines

Il est de pratique courante d'enrichir les protéines à des niveaux élevés d'enrichissement en 13C afin d'effectuer des affectations spectrales et de déterminer finalement la structure. Cependant, un niveau élevé d'enrichissement uniforme en 13C crée un couplage scalaire et dipolaire entre les noyaux 13C directement liés, ce qui, pour les séquences dipolaires utilisées en RMN à l'état solide, crée de grands signaux qui obscurcissent souvent les signaux de faible intensité et riches en informations produits par un couplage à longue distance. Pour les séquences scalaires utilisé dans la RMN à l'état de solution, la présence de noyaux 13C directement liés dégrade la résolution spectrale et fournit un mécanisme de relaxation dipolaire indésirable pour le carbone alpha.

La réduction du couplage dipolaire 13C-13C est rendue possible par un marquage 13C clairsemé. Le marquage 13C clairsemé correspond à l'endroit où la protéine exprimée ne contient pas de noyaux 13C adjacents. Ceci peut être accompli pour dans une large mesure en utilisant sélectivement des sources de carbone marquées au 13C pour l'expression des protéines. Il existe plusieurs substrats différents disponibles pour le marquage 13C clairsemé, y compris le glucose, le glycérol et le pyruvate.

Ressources connexes

Stable Isotopes for Biomolecular NMR

Foire aux questions

Qu'est-ce que l'étiquetage clairsemé et en quoi cela aide-t-il ? Dans l'étiquetage clairsemé, seule une fraction aléatoire des atomes de carbone de la protéine sont marqués. Cela facilite les expériences à l'état solide car il supprime les couplages forts à une liaison (c'est-à-dire deux atomes de 13C l'un à côté de l'autre), qui donnent lieu à de grands pics qui masquent les couplages plus petits et à longue portée ( plus utile pour obtenir des informations structurelles). Les glycérols 2-13C et 1,3-13C2 sont les sources de carbone les plus populaires ; Les glucoses 1-13C et 2-13C sont également populaires.

Ce que types de supports peuvent être utilisés dans un étiquetage clairsemé ? Seulement E. coli et des cellules de levure peuvent être utilisées.

Exemples de références

Robson, S.A.; Takeuchi, K.; Boeszoermenyi, A.; et al. 2018. Mixed pyruvate labeling enables backbone resonance assignment of large proteins using a single experiment. Nat Commun, 9(1), 356-366. PMID: 29367739
Loquet, A.; Giller, K.; Becker, S.; et al. 2010. Supramolecular interactions probed by 13C-13C solid-state NMR spectroscopy. J Am Chem Soc, 132, 15164-15166. PMID: 20932028
Wylie, B.J.; Schwieters, C.D.; Oldfield, E.; et al. 2009. Protein structure refinement using 13Cα chemical shift tensors. J Am Chem Soc, 131(3), 985-992. PMID: 19123862