Spärliche Markierung für Protein-NMR

Es ist gängige Praxis, Proteine auf ein hohes Maß an 13C-Anreicherung anzureichern, um spektrale Zuordnungen vorzunehmen und schließlich die Struktur zu bestimmen. Ein hohes Maß an gleichmäßiger 13C-Anreicherung führt jedoch zu einer skalaren und dipolaren Kopplung zwischen den direkt gebundenen 13C-Kernen, die für dipolarbasierte Sequenzen, die in der Festkörper-NMR verwendet werden, große Signale erzeugen, die oft signalträchtige Signale mit geringer Intensität verdecken, die durch die Kopplung mit großer Reichweite erzeugt werden. Bei skalaren Sequenzen, die in der NMR im Lösungszustand verwendet werden, verschlechtert das Vorhandensein von direkt gebundenen 13C-Kernen die spektrale Auflösung und stellt einen unerwünschten dipolaren Relaxationsmechanismus für den Alpha-Kohlenstoff dar. 

Die Reduzierung der dipolaren Kopplung von 13C-13C wird durch spärliche 13C-Markierung ermöglicht. Bei der 13C-spärlichen Markierung enthält das exprimierte Protein keine benachbarten 13C-Kerne. Dies kann zu einem großen Teil durch die selektive Verwendung von 13C-markierten Kohlenstoffquellen für die Proteinexpression erreicht werden. Es gibt verschiedene Substrate für die 13C-spärliche Markierung, darunter Glukose, Glycerin und Pyruvat.

Verwandte Ressourcen

Stable Isotopes for Biomolecular NMR

Häufig gestellte Fragen

Was ist Sparse Labeling und wie hilft es? Beim Sparse Labeling wird nur ein zufälliger Bruchteil der Kohlenstoffatome im Protein markiert. Dies hilft Festkörperexperimenten, da starke Einbindungskopplungen (d. h. zwei 13C-Atome nebeneinander) entfernt werden, die zu großen Peaks führen, die kleinere, weitreichende Kopplungen verdecken ( hilfreicher bei der Beschaffung von Strukturinformationen). 2-13C- und 1,3-13C2-Glycerine sind die beliebteste Kohlenstoffquelle; Beliebt sind auch 1-13C- und 2-13C-Glucose.

Welche Medientypen können bei der Sparse-Markierung verwendet werden? Es können nur E. coli und Hefezellen verwendet werden.

Beispielreferenzen

Robson, S.A.; Takeuchi, K.; Boeszoermenyi, A.; et al. 2018. Mixed pyruvate labeling enables backbone resonance assignment of large proteins using a single experiment. Nat Commun, 9(1), 356-366. PMID: 29367739
Loquet, A.; Giller, K.; Becker, S.; et al. 2010. Supramolecular interactions probed by 13C-13C solid-state NMR spectroscopy. J Am Chem Soc, 132, 15164-15166. PMID: 20932028
Wylie, B.J.; Schwieters, C.D.; Oldfield, E.; et al. 2009. Protein structure refinement using 13Cα chemical shift tensors. J Am Chem Soc, 131(3), 985-992. PMID: 19123862